Antibiotika resistensbestämning av Neisseria gonorrhoeae (gonokocker). |
Antimicrobial susceptibility testing of
Neisseria gonorrhoeae (gonococci).
| ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Inledning Resistensbestämning av gonokocker erbjuder särskilda problem i val av medier, standardisering, metodkontroll och tolkning av resultat. RAF rekommenderar att endast laboratorier med särskilt intresse för Neisseria gonorrhoeae utför resistensbestämning. Laboratorier med få isolat utför en screentest för kinolonresistens (nalidixinsyra-lapp 30 µg) och skickar i övrigt isolatet till Nationella referenslaboratoriet för patogena Neisseria, Universitetssjukhuset Örebro för typning och resistensbestämning. 1994 utgavs "Infektionsdiagnostik. I.6. Sexuellt överförbara infektioner (STD)". Texten nedan (senast reviderad maj 2006) är en omarbetad och uppdaterad version av referensmetodiken som beskrivs i denna utgåva. |
Introduction Susceptibility
testing of Neisseria gonorrhoeae poses special problems in the choice
of media, methods, standardization, and interpretations of results.
The Swedish Reference
Group for Antibiotics (SRGA) recommends that
only laboratories with a special interest in Neisseria gonorrhoeae perform complete antimicrobial
susceptibility testing. Laboratories with few isolates should perform a
screen test for quinolone resistance (nalidixic acid 30 µg disc)
and send the isolates to the National Reference Laboratory for Pathogenic
Neisseria, Örebro
University Hospital for confirmation, typing and susceptibility
testing. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Aktuell resistens för N. gonorrhoeae isolerade i Sverige visas i separat tabell! |
Antimicrobial resistance in
N. gonorrhoeae isolated in Sweden is shown
in a separate table. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Rekommendationer för
resistensbestämning (enligt RAF och Nationella referenslaboratoriet för
patogena Neisseria) Metoder Referenssubstrat. Som referenssubstrat rekommenderas GC Medium Base agar (BD) med 1 % hemoglobin och 1 % IsoVitaleX. Agarspädning referensmetod. Agarspädningsmetod för bestämmande av minsta hämmande koncentration är referensmetod och bas för MIC-bestämningen. Mätosäkerheten är som för alla spädningsmetoderna genomförda enligt referensmetodiken ±1 MIC-steg. Metoden anses mindre väl lämpad som rutinmetod för resistensbestämning av gonokocker. Med agarspädning som referensmetod kan framförallt Etest men även standardiserad diskdiffusion användas som rutinmetod för resistensbestämning av gonokocker. Etest som rutinmetod. Med Etest anges mätvärdet i mg/L och SIR-klassifikationen utförs med angivna brytpunkter i MIC-gränser från RAF, Tabell 1 och 2. Mätosäkerheten med Etest är ±1 MIC-steg (dvs. ±2 skal-streck på Etest-remsan). Betalaktamastest. Slamma
gonokocker, 5x109/mL, i 0,3 ml
avjoniserat sterilt vatten. Nitrocefindisk läggs
i lösningen. Avläsning efter 10 min. Omslag till rött = positiv, gul färg
= negativ. |
Recommendations for
antimicrobial susceptibility testing (according to RAF and Swedish
Reference Laboratory for Pathogenic Neisseria) Methods Reference
substrate. GC Medium Base (BD) agar with 1% hemoglobin and 1% IsoVitalex. Agar dilution
method. The agar dilution method is the reference
method for determining MIC-values. The reproducibility is ±1 dilution
step. The agar dilution method is less suited for routine susceptibility
testing but is needed to calibrate the Etest or
disk diffusion. Etest for routine susceptibility
testing.
The Etest gives values in mg/L. The
reproducibility is ±1 dilution step (i.e. ±2 MIC-values according to the
Etest strip). The results are classified as S, I
or R with the MIC-breakpoints given in the
MIC-breakpoint table 1 and 2
from SRGA. Beta-lactamase test. The bacteria (5x109/ml) are
suspended in 0.3 mL deionized sterile water. A nitrocephin disc is placed in the solution. The test
is read after 10 minutes as negative if yellow and
positive if red. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Diskdiffusion som rutinmetod. Diskdiffusionsmetodens tidigare låga reproducerbarhet vid resistensbestämning av gonokocker kan till stor del tillskrivas brist på standardisering och kvalitetskontroll av metoden. Resultatet av diskdiffusionsmetoden kan inte anges i MIC-värden utan endast som SIR-grupp. För att ange osäkerhet i SIR-grupperingen analogt med agarspädning och Etest bör en gräns sättas kring brytpunkterna med 3 mm på var sida (motsvarande ca ±1 (ett helt) MIC-steg). Om mätvärdet faller inom denna zon anges osäkerheten i SIR-grupperingen. Under perioder med lågt antal gonokockisolat är det enklare och säkrare att använda en standardiserad Etest metod. |
Disk
diffusion for routine susceptibility testing. Disk diffusion can be
performed but requires pronounced standardization. Historically the disk
diffusion method in susceptibility testing of N. gonorrhoeae has been fraught with poor
reproducibility. During times with few isolates it is easier and safer to
use a standardized Etest
methodology. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Intern kvalitetssäkring. Om ett relativt lågt antal gonokockisolat analyseras årligen på laboratoriet bör en intern kvalitetssäkring av resistensbestämningen ske i samband med varje klinisk resistensbestämning av N. gonorrhoeae. I annat fall kan en kvalitetssäkring utföras regelbundet (en gång per vecka eller månad beroende av antalet analyser) och vid ”batch”-byte av basagar. Lämpliga referensstammar beskrivs i tabellen nedan. |
Internal
quality control. If
relatively few isolates are analysed annually at
the laboratory, an internal quality control of antimicrobial
susceptibility testing should be performed whenever a routine AST is performed. If many isolates
are analysed, an internal quality control can be performed once a week or
once a month (dependent on the number of isolates) and when the batch of
the base agar is changed. Suitable reference strains are described in the table
below1. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Antibiotika som ingår i rutinmässig
resistensbestämningen av Neisseria
gonorrhoeae (Nationella referenslaboratoriet
för patogena Neisseria).
Ampicillin analyseras som representant för
beta-laktamas instabila penicilliner. Azitromycin utgör representant för makrolider. Cefixim och ceftriaxon
representerar beta-laktamas stabila cefalosporiner. Ciprofloxacin är den kinolon
som oftast använts i Sverige för gonorrébehandling. |
Antibiotics in the
routine susceptibility testing of Neisseria gonorrhoeae (National Reference Laboratory for
Pathogenic Neisseria).
| ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Tolkning Definition av känslighetsgrupperna S, I och R. Det har visat sig svårt att anpassa gränsvärden för vissa antibiotika till känslighetsgrupper för resistensbestämning av gonokocker till SIR-systemet. Höggradig plasmidmedierad resistens mot penicilliner (beta-laktamasproducerande stammar) identifieras utan problem. Vid kromosomal resistens däremot föreligger i många fall stegvis resistensutveckling. Detta medför att isolaten inte är indelade i en känslig och en resistent population och att SIR-tolkningen inte alltid kan göras med god reproducerbarhet. Många isolat har MIC på gränsen mellan känslighetsgrupperna varför S/I och I/R lätt kan komma att ändras vid upprepade resistensbestämningar av samma stam. Traditionell behandling av okomplicerad genital gonorré sker som en- eller tvådosbehandling med krav på utläkning i >95 % av behandlade fall där isolatet bedöms som känsligt för medlet ifråga. Känslighetsgrupperna S, I och R betyder således inte detsamma för gonokockerna som vid resistensbestämning av övriga bakterier. Definitionen av R är också annorlunda än för övriga bakterier: R betyder att sannolikheten för att uppnå utläkning är mindre än 90 %. Denna indelning av känslighetsgrupperna är i enlighet med rekommendationerna från WHO Collaborating Centre, Statens serum institut (SSI), Köpenhamn, Danmark. · känslig (S) >95 % behandlingseffekt med rekommenderad dos vid behandling av okomplicerad genital gonorré. · indeterminant (I) 90-95 % effekt med rekommenderad dos vid behandling av okomplicerad genital gonorré, eller >95 % effekt vid ökad dosering. · resistent (R) <90 % effekt av rekommenderad dos vid behandling av okomplicerad genital gonorré. Observera således att ovanstående SIR-indelning och nedan
angivna gränsvärden avser okomplicerad gonorré.
Gränsvärden för indelning av Neisseria gonorrhoeae vid okomplicerad genital gonorré i
känslighetsgrupperna S, I och R. |
Interpretation S, I and R in
uncomplicated genital gonorrhoeae.
Neisseria gonorrhoeae do not for all antimicrobials present
themselves in proper uni- or bimodal MIC- or
zone diameter distributions. The lack of a natural host beside man has
corrupted the wild type gonococci to a degree where "normal" or "wild
type" populations are hard to identify for many antibiotics. This affects
the reproducibility of results since there are few natural places to
divide one part of the population from another. This affects both disk
diffusion and MIC-testing irrespective of technique.
Traditional therapy
of uncomplicated genital gonorrhoea consists of one or two doses of
antibiotics with the expectance of a >95% cure if the isolate is
considered susceptible to the antibiotic in question. The definition of
"R" is also different for gonococci than the standard SRGA-definition - the probability of cure is
less than 90%. This classification is in accordance with the
recommendations of the WHO Collaborating Centre, Statens Serum Institut,
Copenhagen, Denmark. ·
susceptible (S) >95% cure
attained with recommended dose in the treatment of uncomplicated genital
gonorrhoea. ·
indeterminant (I) 90-95% cure attained with
recommended dose in the treatment of uncomplicated genital gonorrhoea or
>95% cure if the dose is increased. ·
resistant (R) <90% cure attained with
recommended dose in the treatment of uncomplicated genital gonorrhoea.
Observe that
the SIR-definitions and the MIC-breakpoints are for uncomplicated genital
gonorrhoea. MIC-breakpoint from SRGA (Table 1 and 2) show breakpoints for S-, I-
and R-classification of Neisseria
gonorrhoeae in uncomplicated genital
gonorrhoea. The breakpoints are based on the
assumption that the serum concentration of the antibiotic should
supersede the MIC during a defined period
of time. The breakpoints for benzylpenicillin
and ampicillin are only valid if the patient
receives concomitant probenicid to prolong the
penicillin excretion. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
|
| ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Referensstammar för resistensbestämning Nationella referenslaboratoriet i Örebro använder och rekommenderar nu följande gonokockstammar för bedömning av kvaliteten på resistensbestämningarna: SSI 130/92
(CCUG
41810) (tetracyklin-resistent) Referensstammarna kan erhållas från Culture Collection of the University of
Gothenburg (CCUG). Accepterade gränser för referensstammarna då de utnyttjas för kontroll av resistensbestämningarna med Etest framgår av tabellen nedan 1. |
Reference
strains for susceptibility testing The
Swedish Neisseria reference laboratory in Örebro recommends that the following gonococcal reference strains are used in the quality control of
susceptibility testing. The target MIC-values and acceptable
variation are shown in the Table below. SSI
130/92 (CCUG 41810) (tetracycline
resistant) The
reference strains can be obtained from the Culture Collection of the
University of Gothenburg (CCUG). | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Tabell. Accepterade MIC-värden (mg/L) vid
resistensbestämning av referensstammar.
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Referensstam/ |
130/92 |
91-25 |
91-51 |
40-1996 |
|
penicillin G |
0,064-0,25 |
0,25-1,0 |
8-32 |
- |
|
ampicillin |
0,064-0,25 |
0,064-0,25 |
2-8 |
- |
|
cefuroxim |
0,016-0,064 |
0,064-0,25 |
2-8 |
0,032-0,125 |
|
cefixim |
<0,016 |
<0,016 |
0,032-0,125 |
<0,016 |
|
ceftriaxon |
<0,002-0,008 |
0,004-0,016 |
0,064-0,25 |
0,004-0,016 |
|
erytromycin |
0,125-0,50 |
0,25-1,0 |
1-4 |
0,5-2 |
|
azitromycin |
0,016-0,064 |
0,064-0,25 |
0,25-1 |
0,125-0,5 |
|
ciprofloxacin |
0,002-0,008 |
0,064-0,25 |
0,008-0,032 |
1-4 |
|
spectinomycin |
8-32 |
>1024 |
8-32 |
8-32 |
|
tetracyklin |
8-32 |
0,50-2 |
2-8 |
0,5-2 |
|
beta-lactamase |
neg |
Neg |
neg |
pos |
Referenssubstrat för resistensbestämning av Neisseria gonorrhoeae
A.
GC Medium Base (BD) agar - 36
g
B. RO-vatten - 600 mL
C. Hemoglobin Powder - 10 g
D. RO-vatten - 400 mL
E. IsoVitaleX Enrichment - 10 mL
Beredning: Blanda C och D (hemoglobin och
RO-vatten) i en kolv. Rör om med omrörare 30 min. Blanda A och
B (GC Medium Base agar och RO-vatten) i en
kolv. Autoklavera kolvarna:
Autoklavparametrar: TEMP 121° och tid 15 min
Beredning av
tillsatser: Gör iordning E
enl anvisningar på förpackningen. När agarn ska gjutas (låt svalna till ca 50° C i vattenbad), häll C-D i
A-B samt blanda i E. OBS! Använd tratt och sil som
finns sterilförpackade.
pH-värde: 7,0 - 7,4
Dispensering: 60 mL i 14 cm petriskål
eller 25 mL i 9 cm petriskål så att ett 4 mm
djupt agarskikt erhålles.
Förvaring: I plastpåse. Hållbarhet i
plastpåse 8 veckor.
Reference
substrate for susceptibility testing of Neisseria gonorrhoeae
GC plates
SRGA-recommendation (1 L)
Declaration:
A.
GC Medium Base (BD) agar - 36
g
B.
Sterile water (RO-quality) - 600 mL
C.
Hemoglobin Powder - 10 g
D.
Sterile water (RO-quality) - 400 mL
E.
IsoVitaleX Enrichment - 10 mL
Preparation: Mix C
and D (hemoglobin and water) and stir for
30 minutes. Mix A and B (GC Medium Base agar and water) in a
separate flask.
Autoclave both mixtures (temperature
121° for 15 min).
Prepare E (IsoVitaleX) in accordance with the package
insert.
Mix C-D in A-B and add
E.
pH: 7.0 -
7.4
Dispense: 60 mL in 14 cm
petri dishes or 25 mL
in 9 cm petri dishes to produce a 4 mm deep agar
layer.
Store: in a sealed plastic bag for a maximum 8
weeks.
Magnus Unemo, Per Olcén & Hans Fredlund, Örebro och Gunnar Kahlmeter, RAF-M
2006-05-15